Identificar as origens celulares dos tecidos regeneradores é uma questão fundamental na biologia da regeneração. Vários estudos têm realizado análises de mapeamento do destino para investigar a origem celular do músculo cardíaco durante a regeneração do coração em zebrafish. Utilizando técnicas de mapeamento do destino genético induzível (Buckingham e Meilhac, 2011), dois estudos examinaram directamente a contribuição dos cardiomiócitos para o coração regenerado em zebrafish (Jopling et al., 2010; Kikuchi et al., 2010). Em ambos os casos, foram utilizadas duas linhas transgénicas: uma linha contém um gene 4-hidroxiamoxifeno (4-HT) – induzível Cre recombinase (CreER) a partir do qual a expressão é impulsionada nos cardiomiócitos pelo promotor do gene da cadeia leve da miosina cardíaca 2 (cmlc2), também conhecido como gene da cadeia leve da miosina 7 (myl7); e a outra é uma linha indicadora na qual a expressão da proteína fluorescente verde reforçada (EGFP) pode ser induzida nas células de expressão de CreER após a excisão da cassete de paragem transcripcional loxP-flanked por tratamentos 4-HT (Jopling et al., 2010; Kikuchi et al., 2010). Utilizando este sistema, quase todos os cardiomiócitos que expressam cmlc2 foram pré-rotariados com EGFP por tratamentos 4-HT antes da lesão, e as experiências de regeneração foram realizadas 30 dias após a ressecção ventricular. Os resultados de ambos os estudos mostraram claramente que a grande maioria do miocárdio regenerado é rotulado com EGFP, sem diferença significativa detectada na proporção de cardiomiócitos EGFP+ no tecido regenerado em comparação com os ventrículos não lesionados, indicando que os cardiomiócitos cmlc2+ existentes, mas não cmlc2- não miócitos, são a principal fonte de músculo novo durante a regeneração do coração zebrafish.
Células derivadas do epicárdio (EPDCs) demonstraram anteriormente contribuir e regular a vascularização durante a regeneração cardíaca em zebrafish (Kim et al.., 2010; Lepilina et al., 2006); contudo, a sua contribuição para a regeneração do miocárdio não foi directamente testada. Estudos recentes abordaram esta questão utilizando duas abordagens diferentes: mapeamento do destino genético (Kikuchi et al., 2011a) e transplante (González-Rosa et al., 2012). No estudo de mapeamento do destino genético induzível, as sequências cis-reguladoras do factor de transcrição 21 (tcf21), também conhecido como Epicardin (Robb et al., 1998), Pod1 (Quaggin et al., 1999), Capsulin (Hidai et al., 1998; Lu et al., 1998), foram utilizados para direccionar o CreER para o epicárdio do zebrafish (Serluca, 2008), e a sua descendência foi rastreada durante a regeneração após a rotulagem dependente do CreER com EGFP, que foi induzida a partir de uma linha indicadora com um tratamento 4-HT transitório. No ensaio de transplante, foi recolhido um pedaço de tecido cardíaco do ventrículo ferido da estirpe β-actin:EGFP, no qual a maioria das células cardíacas, incluindo as células epicárdicas, foram rotuladas com EGFP, e transplantadas para um coração do tipo selvagem recentemente ferido que tinha sido irradiado antes da lesão para suprimir a proliferação de células no tecido receptor. Em ambos os estudos, foram detectadas muitas células com destino mapeado no regenerado e histologicamente caracterizadas como miofibroblastos (González-Rosa et al., 2012) e células perivasculares (González-Rosa et al., 2012; Kikuchi et al., 2011a), mas não como cardiomiócitos (González-Rosa et al., 2012; Kikuchi et al., 2011a). Estes resultados indicam que o epicárdio ou EPDCs não dão origem a músculo cardíaco durante a regeneração do coração zebrafish, o que é consistente com a descoberta de que os cardiomiócitos são a principal fonte de regeneração do miocárdio.
As experiências de rastreio de linhagem descritas acima não abordaram se a população cmlc2+ inclui múltiplos tipos de células musculares que podem contribuir de forma diferente para a regeneração. Recentemente, Poss e colegas geraram um sistema transgénico que permite a etiquetagem clonal multicolor dos cardiomiócitos, e definiram linhagens miocárdicas anteriormente não caracterizadas, ao mesmo tempo que revelavam os seus comportamentos durante a morfogénese do coração zebrafish (Gupta e Poss, 2012). Este sistema consistia em dois alelos transgénicos, cmlc2:CreER (Kikuchi et al., 2010) e uma cassete de repórter multicolor chamada priZm, que foi construída utilizando a tecnologia Brainbow originalmente desenvolvida para visualizar neurónios individuais e ligações no cérebro do rato (Livet et al., 2007) (Fig. 1A). Utilizando este sistema, os autores induziram a etiquetagem clonal multicolor a 2 dias após a fertilização, e realizaram análises de imagem em várias fases de desenvolvimento para caracterizar em detalhe como os clones cardiomiócitos se comportam durante a morfogénese do coração.